Целью исследования было изучение путей морфогенеза, особенностей регенерации различных эксплантов в культуре in vitro и разработка биотехнологических приёмов микроразмножения и сохранения перспективных сортов канны садовой. Эксперименты проводили в лаборатории биотехнологии и вирусологии растений Никитского Ботанического Сада - Национального Научного Центра. Для индукции адвентивного побегообразования эксплантов использовали питательную среду Мурасиге и Скуга (МС) с 30 г/л сахарозы, 10 г/л агар-агара с регуляторами роста БАП и ТДЗ. Для депонирования in vitro экспланты (вегетативные почки и меристемоиды) помещали на модифицированную нами среду МС с 60 г/л сахарозы и 0,2-0,4 г/л ССС. Культуральные сосуды с эксплантами переносили в холодильные камеры с низкой позитивной температурой (2 - 6°С) и освещенностью 0,1-0,5 клк. Установлено, что для активного адвентивного побегообразования при культивировании эксплантов сортов Дар Востока и Суевия необходимо добавление в питательную среду МС 1,27 мг/л ТДЗ, для сорта Ливадия - 1,91 мг/л ТДЗ. Показано, что для депонирования меристемоидов сортов Дар Востока, Ливадия и Суевия оптимальной является питательная среда ½ МС с 0,15-0,25 г/л ССС; для адвентивных побегов сорта Суевия - ½ МС с 0,2 г/л ССС.
The aim of the study was to investigate means of morphogenesis and explant regeneration characteristics in in vitro culture and to develop biotechnological methods for micropropagation and conservation of promising garden varieties of Canna. The experiments were conducted in the plant biotechnology and virology laboratory of the Nikitsky Botanical Garden, National Centre of Science. For the induction of adventitious shoot development of explants, a Murashige and Skoog (MS) nutrient medium was used having 30 g / l of sucrose, 10 g / l of agar-agar with BAP and TDZ growth regulators. For the in vitro deposition, explants (vegetative buds and meristemoids) were placed on a modified MS medium having 60 g / l of sucrose and 0.2-0.4 g / l of CCС. The culture vessels with explants were transferred to cooling chambers with a low positive temperature (2-6 ° C) and an illumination of 0.1-0.5 klx. It was found that for active adventitious shoot formation during cultivation of Dar Vostoka and Suevia explant varieties, it is necessary to add 1.27 mg / l of TDZ to the MS nutrient medium, and 1.91 mg / l of TDZ for the Livadia variety. It is shown that for the deposition of meristemoids of Dar Vostoka, Livadia and Suevia varieties, the nutrient medium of ½ MS with 0.15-0.25 g / l of CCC is optimal; for adventitious shoots of the Suevia variety, the optimal nutrient was ½ MS with 0.2 g / l of CCC.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.