Защитное действие некоторых биоактивных компонентов из экстрактов и эфирного масла шалфея лекарственного при остром поражении печени и почек у мышей, вызванном ацетаминофеном

Повреждения печени и почек, вызванные лекарственными препаратами и токсичными веществами, являются основной причиной печеночной и почечной дисфункции. В последнее время предложено множество способов лечения такого рода поражений – как с помощью химических препаратов, так и при помощи методов традиционной медицины. В связи с этим поиск новых классов природных и безопасных соединений для данных целей является настоятельной потребностью. Род Salvia семейства яснотковых (Lamiaceae) хорошо изучен и широко используется в традиционной медицине. Растение содержит множество вторичных метаболитов, таких как терпеноиды, которые обладают разнообразной фармакологической активностью. На основании многочисленных данных о фармакологической эффективности Salvia officinalis L. (шалфея лекарственного, I) в данном исследовании изучено защитное действие некоторых экстрактов и эфирного масла этого растения при поражении печени и почек у мышей, подвергшихся воздействию ацетаминофена. Результаты показали, что наилучшее защитное действие при поражении почек оказывают хлороформенный и четыреххлористоуглеродный экстракты шалфея лекарственного, при поражении печени эффективны хлороформенный, спиртовой и водно-спиртовой экстракты шалфея лекарственного. Можно сделать вывод, что экстракция шалфея лекарственного полярными и неполярными органическими и водными растворителями позволяет выделить различные биоактивные компоненты, которые значительно улучшают некоторые сывороточные маркеры повреждения печени и почек, вызванного ацетаминофеном у мышей.

1. Qin J., Ma Y., Wang C., Li H., Zou Z., Zhang Y., et al. Effects of carnosine combined with Lactobacillus on the antioxidant capacity of liver and kidney in normal or stressed mice. Food Bioscience. 2024;59:103904. DOI: 10.1016/j.fbio.2024.103904.

2. Zheng X., Li S., Wang K., Wang Z., Li J., Yang Q., et al. Comparing the pharmacological effects of the prepared folium of Epimedium brevicornu Maxim. and Epimedium sagittatum Maxim. on kidney-Yang deficiency syndrome and liver injury complications. Fitoterapia. 2024;176:106006. DOI: 10.1016/j.fitote.2024.106006.

3. Li D.-D., Li W.-J., Kong S.-Z., Li S.-D., Guo J.-Q., Guo M.-H., et al. Protective effects of collagen polypeptide from tilapia skin against injuries to the liver and kidneys of mice induced by D-galactose. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2019;117:109204. DOI: 10.1016/j.biopha.2019.109204.

4. Jaffri J.M., Mohamed S., Ahmad I.N., Mustapha N.M., Manap Y.A., Rohimi N. Effects of catechin-rich oil palm leaf extract on normal and hypertensive rats’ kidney and liver. Food Chemistry. 2011;128(2):433-441. DOI: 10.1016/j.foodchem.2011.03.050.

5. Lafhal K., Sabir E., Elkhiat A., Hammoud M., Makbal R., Ezoubeiri A., et al. Rosa damascena Mill attenuated the liver and kidneys injuries in copper-overloaded mice. Molecular Genetics and Metabolism. 2021;132(2):S61. DOI: 10.1016/j.ymgme.2020.12.137.

6. Ghorbani A., Esmaeilizadeh M. Pharmacological properties of Salvia officinalis and its components. Journal of Traditional and Complementary Medicine. 2017;7(4):433-440. DOI: 10.1016/j.jtcme.2016.12.014.

7. Walker J.B., Sytsma K.J., Treutlein J., Wink M. Salvia (Lamiaceae) is not monophyletic: implications for the systematics, radiation, and ecological specializations of Salvia and tribe Mentheae. American Journal of Botany. 2004;91(7):1115-1125. DOI: 10.3732/ajb.91.7.1115.

8. Rasmy N.M., Hassan A.A., Foda M.I., El-Moghazy M.M. Assessment of the antioxidant activity of sage (Salvia officinalis L.) extracts on the shelf life of mayonnaise. World Journal of Dairy & Food Sciences. 2012;7(1):28-40.

9. Fawzi M., Kadhem Z., Farhan S. Anti-inflammatory effect of sage (Salvia officinalis) extracts on oral health. Iraqi Dental Journal. 2017;39(1):1-6. DOI: 10.26477/idj.v39i1.111.

10. Monsefi M., Abedian M., Azarbahram Z., Ashraf M.J. Salvia officinalis induces alveolar bud growing in adult female rat mammary glands. Avicenna Journal of Phytomedicine. 2015;5(6):560-567. DOI: 10.22038/ajp.2015.4638.

11. Akhondzadeh S., Noroozian M., Mohammadi M., Ohadinia S., Jamshidi A.H., Khani M. Salvia officinalis extract in the treatment of patients with mild to moderate Alzheimer’s disease: a double-blind, randomized and placebo-controlled trial. Journal of Clinical Pharmacy and Therapeutics. 2003;28:53-59. DOI: 10.1046/j.1365-2710.2003.00463.x.

12. Stanojević D., Čomić L., Stefanovic O., Solujić-Sukdolak S. In vitro synergistic antibacterial activity of Salvia officinalis L. and some preservatives. Archives of Biological Sciences. 2010;62(1):175-183. DOI: 10.2298/ABS1001167S.

13. Jedinák A., Mučková M., Košt’álová D., Maliar T., Mašterová I. Antiprotease and antimetastatic activity of ursolic acid isolated from Salvia officinalis. Zeitschrift für Naturforschung C. 2014;61(11-12):777-782. DOI: 10.1515/znc-2006-11-1203.

14. Jedidi S., Rtibi K., Selmi S., Aloui F., Selmi H., Wannes D., et al. Phytochemical/antioxidant properties and individual/synergistic actions of Salvia officinalis L. aqueous extract and loperamide on gastrointestinal altering motor function. Journal of Medicinal Food. 2019;22(12):1235-1245. DOI: 10.1089/jmf.2019.0051.

15. Jedidi S., Aloui F., Rtibi K., Sammari H., Selmi H., Rejeb A., et al. Individual and synergistic protective properties of Salvia officinalis decoction extract and sulfasalazine against ethanol-induced gastric and small bowel injuries. RSC Advances. 2020;10(59):35998-36013. DOI: 10.1039/D0RA03265D.

16. Koubaa-Ghorbel F., Chaâbane M., Turki M., Makni-Ayadi F., El Feki A. The protective effects of Salvia officinalis essential oil compared to simvastatin against hyperlipidemia, liver, and kidney injuries in mice submitted to a high-fat diet. Journal of Food Biochemistry. 2020;44(4):e13160. DOI: 10.1111/jfbc.13160.

17. Amraoui W., Adjabi N., Bououza F., Boumendjel M., Taibi F., Boumendjel A., et al. Modulatory role of selenium and vitamin E, natural antioxidants, against bisphenol A-induced oxidative stress in Wistar albinos rats. Toxicological Research. 2018;34:231-239. DOI: 10.5487/tr.2018.34.3.231.

18. Chandorkar N., Tambe S., Amin P., Madankar C. A systematic and comprehensive review on current understanding of the pharmacological actions, molecular mechanisms, and clinical implications of the genus Eucalyptus. Phytomedicine Plus. 2021;1(4):100089. DOI: 10.1016/j.phyplu.2021.100089.

19. Zámboriné Németh É., Nguyen H.T. Thujone, a widely debated volatile compound: what do we know about it? Phytochemistry Reviews. 2020;19:405-423. DOI: 10.1007/s11101-020-09671-y.

20. Chebbac K., Moussaoui A.E.L, Bourhia M., Salamatullah A.M., Alzahrani A., Guemmouh R. Chemical analysis and antioxidant and antimicrobial activity of essential oils from Artemisia negrei L. against drug-resistant microbes. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2021:5902851. DOI: 10.1155/2021/5902851.

21. Dew S.E., Wardlaw S.A., Ong D.E. Effects of pharmacological retinoids on several vitamin A-metabolizing enzymes. Cancer Research. 1993;53(13):2965-2969.

22. Trevizan L.N.F., do Nascimento K.F., Santos J.A., Liete Kassuya C.A, Lima Cardoso C.A., do Carmo Vieira M., et al. Anti-inflammatory, antioxidant, and anti-Mycobacterium tuberculosis activity of viridiflorol: the major constituent of Allophylus edulis (A. St.-Hil., A. Juss. & Cambess.) Radlk. Journal of Ethnopharmacology. 2016;192:510-515. DOI: 10.1016/j.jep.2016.08.053.

23. Du Q., Xin H., Peng C. Pharmacology and phytochemistry of the Nitraria genus (review). Molecular Medicine Reports. 2015;11(1):11-20. DOI: 10.3892/mmr.2014.2677.

24. Jeong J.B., Hong S.C., Jeong H.J., Koo J.S. Anti-inflammatory effect of 2-methoxy-4-vinylphenol via the suppression of NF-κB and MAPK activation, and acetylation of histone H3. Archives of Pharmacal Research. 2011;34:2109-2116. DOI: 10.1007/s12272-011-1214-9.

25. Verma A., Joshi S., Singh D. Imidazole: having versatile biological activities. Journal of Chemistry. 2013;2013:329412. DOI: 10.1155/2013/329412.

26. Morovvati H., Armand N. Investigate the effect of alcoholic extract of bulbs of narcissus (Narcissus tazetta L.) on indexes of renal function. Feyz, Journal of Kashan University of Medical Sciences. 2020;24(1):56-62. (In Arabic).

27. Hou G., Surhio M.M., Ye H., Gao X., Ye Z., Li J., et al. Protective effects of a Lachnum polysaccharide against liver and kidney injury induced by lead exposure in mice. International Journal of Biological Macromolecules. 2019;124:716-723. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2018.11.133.

28. Mohamadi Yarijani Z., Najafi H. Kidney injury in COVID-19 patients, drug development and their renal complications: review study. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2021;142:111966. DOI: 10.1016/j.biopha.2021.111966.

29. Sheng M.-Y., Peng D.-W., Peng H.-M., Zhang Y.-L., Xiao L., Zhang M.-R., et al. Effective substances and molecular mechanisms guided by network pharmacology: an example study of Scrophulariae Radix treatment of hyperthyroidism and thyroid hormone-induced liver and kidney injuries. Journal of Ethnopharmacology. 2024;326:117965. DOI: 10.1016/j.jep.2024.117965.

30. Hao R., Ge J., Ren Y., Song X., Jiang Y., Sun-Waterhouse D., et al. Caffeic acid phenethyl ester mitigates cadmium-induced hepatotoxicity in mice: Role of miR-182-5p/TLR4 axis. Ecotoxicology and Environmental Safety. 2021;207:111578. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2020.111578.

31. Aithal G.P., Watkins P.B., Andrade R.J., Larrey D., Molokhia M., Takikawa H., et al. Case definition and phenotype standardization in drug-induced liver injury. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 2011;89(6):806-815. DOI: 10.1038/clpt.2011.58.

32. Saito C., Zwingmann C., Jaeschke H. Novel mechanisms of protection against acetaminophen hepatotoxicity in mice by glutathione and N-acetylcysteine. Hepatology. 2010;51(1):246-254. DOI: 10.1002/hep.23267.

33. He X., Peng X., Zhang S., Yang T., Huo J., Zhang Y. Hepatoprotective effect of diammonium glycyrrhizinate and neuroprotective effect of piperazine ferulate on AmB-induced liver and kidney injury by suppressing apoptosis in vitro and in vivo. Toxicon. 2024;246:107795. DOI: 10.1016/j.toxicon.2024.107795.